Effect of foliar application of DSE fungal solution on growth of Morus alba and its prospects of ecological restoration application
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摘要:
微生物复垦技术在西部干旱–半干旱煤矿区生态修复中已被广泛应用，便捷的微生物菌剂施用方式对于提高采煤沉陷地生态治理效率具有重要意义。试验以蛋白桑为研究对象，供试菌剂为深色有隔内生真菌(dark septate endophyte，DSE)，采用温室盆栽试验，设置DSE菌液根际接种(GXZR)、DSE菌液叶片涂抹(YMTM)和对照蛋白桑(CK)3个处理，探究不同菌液接种方式对蛋白桑生长发育影响及其生态修复前景。结果表明，与CK相比，YMTM与GXZR处理均能显著提高蛋白桑地上生物量，增加幅度为1.9~3.3倍；同时YMTM与GXZR处理促进了蛋白桑对土壤C、N、P的吸收，全碳分别提升164.8%和121.8%、全氮分别提升177.7%和132.4%、全磷分别提升113.6%和28.7%。此外，YMTM与GXZR处理蛋白桑的相对饲用价值显著提升1.04和1.07倍。这些结果表明，DSE叶面涂抹促进蛋白桑对土壤C、N的吸收，使蛋白桑株高、冠幅、根茎叶生物量也得到显著提升，具有较强的碳汇作用。此外，DSE菌液叶面涂抹能够使DSE快速定殖于蛋白桑叶片，具有养分吸收快、利用率高、见效快的特点。因此，DSE叶面涂抹可作为一种新的微生物菌肥施用方式在矿区生态修复中应用，为煤矿区土地复垦与生态修复提供技术支撑。
Abstract:Microbial reclamation technology has been widely used in the ecological restoration of western arid and semi-arid coal mining areas. Convenient application of microbial agent has important significance for improving the efficiency of ecological management in coal-mining subsidence. Herein, this study tested with Morus alba as the study object, and the dark septate endophyte (DSE) as the test fungus. using a greenhouse pot experiment with three treatments, which including the root inoculation of DSE fungus (GXZR), foliar application of DSE fungus (YMTM) and control Morus alba (CK), this study investigated the effects of different inoculation methods on the growth of Morus alba and its ecological restoration prospects. The results show that: (1) Compared with CK, both YMTM and GXZR treatments could significantly increase the aboveground biomass of Morus alba by 1.9 to 3.3 times. (2) YMTM treatment also significantly increases the adsorption of Morus alba to carbon, nitrogen and phosphorus by 164.8%, 177.7% and 113.6% respectively, while the GXZR treatment has them increased by 121.8%, 132.4% and 28.7% respectively. (3) The relative forage value of Morus alba subjected to YMTM and GXZR treatment is significantly increased by 1.04 and 1.07 times respectively. These results indicate that YMTM could promote the uptake of soil carbon and nitrogen by Morus alba, resulting in a significant increase in plant height, crown size, and root and leaf biomass of Morus alba as well. Further, it realized a strong effect of carbon sink. Moreover, the YMTM could make DSE colonize the leaves of Morus alba rapidly, which has the characteristics of fast nutrient uptake, high utilization rate and quick effect. Therefore, YMTM could be applied as a new microbial fertilizer application method in the ecological restoration of mining areas, thus providing technical support for land reclamation and ecological restoration in coal mining areas.
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Keywords:
- Morus alba /
- dark septate endophyte (DSE) /
- coal mining area /
- ecological restoration
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近年来，我国煤炭生产与消费占一次能源结构的70%左右[1]，且规模日益扩大。西部干旱−半干旱煤矿区是生态环境最为脆弱的地区之一，煤炭开采引起水土环境变化、植被退化、土地荒漠化，使原本脆弱的生态环境日趋恶化，资源开发与环境保护矛盾加剧[2]。大量专家学者从生态修复和环境治理层面进行了探索与试验研究，矿山生态修复工作不仅关注生态环境效益[3]，更多关注其经济效益和社会效益。因而采用经济作物进行矿山生态治理不仅具有巨大的生态和经济效益，带动社会效应，而且可最大程度地挖掘并提高煤矿区土地产出和土地价值，是西部干旱−半干旱煤矿区绿色高效发展的一条新途径[4]。
蛋白桑(Morus alba)，又称饲料桑，落叶乔木或灌木，具有抗干旱、耐严寒、耐贫瘠、抗风沙、抗沙埋、适应性强等抗逆境特性[5]，同时桑叶产量高、蛋白质含量高、氨基酸种类丰富、纤维素含量低，且含有丰富的多种活性物质[6]，是禽畜饲料的天然营养保健剂[7-8]，具有极大的开发潜力和应用价值[9]，是西部干旱−半干旱采煤沉陷区进行生态环境修复的优选植物。
微生物复垦技术在生态修复中具有良好的土壤改良、促进植物根系发育等作用，是近年来西部干旱−半干旱采煤沉陷区植被恢复的一种新方法[10]。深色有隔内生真菌(Dark septate endophyte，DSE)是一类能够定殖于植物根系表皮、组织细胞内或细胞间隙内的内生真菌[11]，可以定殖菌根和非菌根植物。其产生的植物激素[12]、次生代谢产物[13]、挥发性化合物[14]和胞外多糖[15]等物质可以促进植物对土壤中碳、氮、磷、钾等营养元素的吸收[16-17]，从而促进植物的生长发育[17-20]。微生物菌剂可作为提升矿区经济作物品质的一种重要研究方向[21]，研究表明DSE菌液施加到土壤中容易被土壤吸附或固定，降低菌肥效果，增加了菌肥施用量；通过叶面施加，可以最高效率促进菌液中有效成分被植物直接吸收，提高植物生长速率及品质[22]。
煤炭开采造成矿区土地生产力降低，生态更为脆弱，采用传统土壤接种方法费工费力，采用叶面施肥的方式可大大提高接菌效率，为后续大面积叶面喷施微生物菌肥的可行性提供研究基础和技术支持。为比较叶面施肥和土壤施肥的施用效率，提高作物品质可行性,拟采用室内盆栽试验，从机理上研究蛋白桑根际土壤接种和叶面涂抹DSE菌液对蛋白桑生长和品质的影响，以期为煤矿区土地复垦提供一种新的微生物高效接种方法，从而促进矿山生态修复高效产业化发展。
1 材料与方法
1.1 试验材料
本研究采用室内盆栽模拟试验， 试验盆钵为直径220 mm、高320 mm的花盆，经紫外线照射进行表面消毒(30 min)。填充土壤为河沙(2 mm筛)，土壤理化性质见表1，并经高压蒸汽灭菌(121℃，2 h)以消除土生的菌根真菌。
表 1 室内盆栽土壤理化性质Table 1. Physical and chemical properties of indoor potting soil密度/(g·cm−3) 有机质含量/(g·kg−1) 全碳含量/(g·kg−1) 全氮含量/(g·kg−1) 全磷含量/(g·kg−1) 速效磷含量/(mg·kg−1) 速效钾含量/(mg·kg−1) 1.60±0.17 0.84±0.12 1.13±0.15 0.80±0.09 0.45±0.06 1.84±0.46 12.35±1.33 每个花盆装填河沙10 kg，河沙中分别按氮水平100 mg/kg、磷水平30 mg/kg和钾水平150 mg/kg施入NH4NO3、KH2PO4 和KNO3 作为氮、磷和钾基肥。
供试菌剂为DSE菌株种属的链格孢属Alternaria sp(保藏编号为CGMCC No.17463)，菌剂由西安科技大学西部矿山生态修复研究院自主培养获得。DSE菌液的制备方法：将活化的DSE接种于PDA固体培养基(PDA为培育微生物的固体营养物质)，于28℃培养7 d，在菌落边缘打孔，得到直径为5 mm的菌片；然后将菌片接种至150 mL MMN(MMN为培育微生物的液体营养物质)液体培养基中，恒温振荡培养(25℃、160 r/min)8 d，然后将制得菌液进行离心(12 000 r/min，15 min)，收集上清，即DSE菌液。
供试蛋白桑品种为“杂交桂桑12”。将蛋白桑种苗用无菌蒸馏水冲洗数遍，种植于灭菌处理的花盆进行育苗。选取植株株高、冠幅、叶片数较为一致且健康的蛋白桑苗进行移栽，每盆1株，移栽深度均为20 cm左右。
1.2 试验设计及处理
试验设计：为了比较土壤接菌和叶面施肥的效率，从机理上揭示接菌对植物品质的影响，设置3个处理，DSE菌液接种于蛋白桑根际土壤(简称GXZR，下同)、涂抹蛋白桑叶片(YMTM)和不接菌对照(CK)，每个处理3个重复。
试验于2021年5月在西安科技大学雁塔校区西部矿山生态环境修复研究院温室内进行。蛋白桑秧苗移栽第4周后进行微生物接菌处理。GXZR处理是将200 mLDSE菌液注入蛋白桑根际。叶面涂抹处理方法：为保证蛋白桑植株接收DSE菌液单位面积涂抹浓度的相同，选取大小相同的5片蛋白桑叶片，采用刷子均匀轻涂抹于叶片，防止菌液溅出与滴落，以保证作用在叶片上的菌液浓度一致，在2 h内将5 mL菌液完全涂抹完，保持最终叶面涂抹浓度(即单位面积涂抹菌液体积)为611.4 mL/m²。
试验在温室中进行，温度维持在20~25℃。每天光暗交替，光照时间为16 h，用生物镝灯补充光照，光照强度为12 000~13 000 Lux，试验周期为80 d。土壤水分维持在田间持水量的40%~50%。
1.3 测定指标与方法
1.3.1 DSE定殖情况
采用Phillips&Hayman的方法[23]测定DSE定殖情况。结果表明CK处理植株根系未检测到菌根侵染，YMTM处理的菌根侵染率为68.5%，GXZR处理的菌根侵染率为50.0%。2种不同接菌方式相比，YMTM和GXZR处理较CK分别显著提升97%和119%。
1.3.2 蛋白桑生长指标
采集各处理蛋白桑的鲜叶、茎和根系，用自封袋封存，并迅速在实验室于4℃冰箱中冷藏保存。用乙醇浸取法测定叶绿素[24]；采集蛋白桑的根、茎、叶称量鲜重，将其在105℃杀青30 min，并在60℃烘至恒重[25]，称量干重；茎叶比为茎鲜重与叶鲜重的比值。
1.3.3 蛋白桑植物养分及品质指标
将烘干植物样品进行粉碎，过筛(0.25 mm)，称取50 mg样品用锡纸包裹进入元素分析仪(vario MACRO cube.elementar)对植物的全碳(C)、全氮(N)进行测定。称取0.1 g样品置于100 mL的消煮管中，采用H2SO4- H2O2消煮法进行消煮，运用ICP(ICP-OES，Optima 5300DV，Perkin Elmer，Waltham，MA)测定全磷(P)。对烘干样进行粉碎过筛(1 mm)称取0.5 g样品放入ringbio滤袋，用范氏法[26]纤维素分析仪(Automatic Fiber Analyzer，R-2000)测定中性洗涤纤维(Neutral Detergent Fiber，NDF，%)、酸性洗涤纤维(Acid Detergent Fiber，ADF，%)，结果以干物质基础平均数表示(即烘干后样品质量)。相对饲用价值 (Relative Feedvalue Value，RFV)、干物质采食量 (Plant Dry Matter Intake，DMI，%)以及可消化干物质(Plant Digestible Drymatte，DDM，%) 按照张吉鹍[27]的方法计算：RFV =DMI×DDM/1.29；DMI=120/NDF；DDM = 88.9–0.779×ADF。
1.4 数据处理及统计分析
所有数据采用 Excel 2003软件进行平均值和标准误差计算；采用IBM SPSS Statistics 21进行单因素(one-way ANOVA)方差分析 (Duncan 检验法)，显著性差异水平设置为α=0.05；运用Origin 2018进行绘图。
2 结果与分析
2.1 不同处理蛋白桑生长指标及生物量
表2为不同处理蛋白桑的生长指标，结果表明YMTM和GXZR处理较CK显著提升2.9和1.9倍；叶鲜重以YMTM处理最佳，较CK处理显著提升3.5倍，GXZR较CK提升190%。与CK相比，YMTM和GXZR处理的茎叶比分别降低32.8%和23.5%。同时，YMTM和GXZR处理的株高和冠幅也显著提高。
表 2 不同处理蛋白桑的生长指标Table 2. Growth indexes of different treatments of Morus alba处理 根鲜重/g 茎鲜重/g 叶鲜重/g 茎叶比 株高/cm 冠幅/cm CK 3.67±0.34b 1.70±0.23b 3.01±1.19b 0.74±0.08a 27.33±1.76b 15.93±1.96b YMTM 7.22±1.01a 6.58±0.90a 13.52±2.67a 0.50±0.05b 57.57±5.62a 28.77±3.50a GXZR 8.05±0.26a 4.95±0.17a 8.72±0.51ab 0.57±0.02ab 47.80±1.68a 28.67±1.27a 注：表中不同小写字母表示同列不同处理间具有显著性差异(α<0.05)，下同。 不同处理下蛋白桑地上、地下生物量和总生物量如图1所示。YMTM与GXZR处理地下生物量较CK分别显著提升1.0倍和1.2倍，地上生物量显著提高3.3倍和1.9倍，总生物量显著提高226.1%与159.6%。有研究发现，在甘蔗茎部近芽处的切面有与DSE相似的真菌结构，因此推测，DSE不仅能在植物根中定殖，也可能侵染到植物茎秆，该推测有待进一步证实[16]，本研究发现，GXZR与YMTM处理蛋白桑根系均存在DSE侵染，YMTM处理蛋白桑根系侵染DSE高达68%，因此推测DSE不仅能在植物根中定殖，也可能从叶片侵染到茎秆最终到达根部。
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图 1 不同处理下蛋白桑地上、地下生物量和总生物量Figure 1. The aboveground and underground biomass and total biomass of Morus alba under different treatments2.2 DSE菌液对蛋白桑叶绿素含量的影响
相较CK处理，YMTM处理叶绿素a、叶绿素b和总叶绿素含量显著增加了53.78%、53.49%和53.30%，GXZR处理分别提升了0.21、0.20和0.21倍(表3)。综合比较表明YMTM处理对蛋白桑叶绿素含量的影响高于GXZR处理。
表 3 不同处理对蛋白桑叶绿素含量的影响Table 3. Effect of different treatments on chlorophyll content of Morus alba处理 叶绿素a含量/(mg·g−1) 叶绿素b含量/(mg·g−1) 总叶绿含量/(mg·g−1) CK 0.85±0.08b 0.49±0.05b 1.34±0.12b YMTM 1.30±0.11a 0.75±0.06a 2.06±0.17a GXZR 1.02±0.06ab 0.59±0.08ab 1.61±0.13ab 2.3 不同处理蛋白桑植株各器官C、N、P含量
不同处理蛋白桑植株各器官C、N、P含量如图2所示。YMTM处理蛋白桑叶片C含量较CK和GXZR处理分别提升5.5%和5.8%；YMTM与GXZR处理根部位C含量较CK处理提升12.3%~13.6%；同一处理不同部位间并无显著差异。GXZR处理叶片N含量比YMTM和CK处理显著高16.5%和16.2%；而茎、根部位CK处理均高于GXZR和YMTM处理；相同处理叶片N含量显著高于茎、根部位。YMTM处理叶片P含量最高，比CK处理提升15.9%。
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图 2 不同处理蛋白桑植株各器官C、N、P含量Figure 2. C, N and P in organs of Morus alba plant with different protein treatments2.4 不同处理土壤及蛋白桑植株C、N、P含量
表4为不同处理土壤及蛋白桑植株C、N、P含量。相较CK处理，YMTM和GXZR处理均能提高了土壤C、N含量，其中YMTM处理较CK处理土壤C、N含量分别增加60.1%和26%。YMTM和GXZR处理蛋白桑植株C、N总积累量较CK处理分别提高1.2~1.7倍、1.3~1.8倍。相较CK处理，YMTM和GXZR处理土壤P含量显著降低36.9%和27.6%，然而蛋白桑植株P含量分别增加113.6%和28.7%。
表 4 不同处理土壤及蛋白桑植株C、N、P含量Table 4. C, N and P in soil and Morus alba plants under different treatments处理 全碳(C) 全氮(N) 全磷(P) 土壤含量/(g·kg−1) 植株总累积量/g 土壤含量/(g·kg−1) 植株总累积量/g 土壤含量/(g·kg−1) 植株总累积量/g CK 0.99±0.03b 1116.44±163.31b 0.10±0.01b 86.11±11.74b 0.38±0.03a 5.54±0.73b YMTM 1.59±0.24a 2956.34±478.30a 0.13±0.01a 239.13±39.00a 0.24±0.02b 11.84±1.95a GXZR 1.19±0.07ab 2476.28±163.30a 0.11±0.01ab 200.08±7.33a 0.28±0.03b 7.14±0.49b 2.5 不同处理蛋白桑饲养价值
图3、图4为蛋白桑不同部位间饲用品质含量。相较CK处理，DSE菌液接种处理蛋白桑叶片的NDF、ADF含量降低，RFV值增加。所有处理蛋白桑叶片部位的ADF和NDF含量均低于茎部位。YMTM与GXZR处理相较CK处理显著降低叶片及地上部的ADF含量41.3%~41.4%，15.4%~18.0%，茎部位的ADF各处理间无显著性差异，地上部ADF含量相较CK处理YMTM与GXZR显著降低18.0%与15.4%。NDF含量叶片部位YMTM处理和GXZR处理相较CK处理均显著性降低19.5%和14.5%，茎部位与地上部位GXZR处理含量显著高于YMTM与GXZR处理。RFV叶片部位高于茎部位，叶部位YMTM处理与GXZR处理相较CK处理分别显著提升1.04倍和1.07倍，茎部位CK处理显著高于其他处理，地上部位YMTM显著高于CK处理(12.2%)和GXZR处理(9.4%)。
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图 3 不同处理下蛋白桑的中性和酸性洗涤纤维含量Figure 3. NDF content and ADF content of Morus alba under different treatments3 讨 论
我国煤炭基地主要集中在生态环境脆弱的干旱−半干旱区，地下煤炭开采形成大面积采空区，易诱发地表沉陷，地裂缝发育、根系拉伤、植被退化等一系列的生态环境问题，给矿区土地复垦与生态修复造成严重制约 [28]。近年来，微生物复垦技术在矿区广泛应用已经取得了良好的生态效应。矿区微生物复垦通常采用人工接菌的方法，存在户外作业危险性大，工期较长，人工成本高，接菌均匀度低等问题。DSE作为微生物复垦技术常用的菌种之一，可以定殖于宿主植物根表皮、皮层，并在维管束组织细胞内和细胞间隙形成菌丝。研究发现甘蔗茎部近芽处存在与DSE相似的真菌结构[16]，表明植物地上部分也可作为接种DSE的一种方式。同时，毕银丽等[29] 发现DSE菌液含有137种化合物，其中氨基酸和肽类化合物可以作为有效的肥料促进植物生长，促进矿区土壤养分的增加，具备作为叶面肥的潜力。
DSE菌液叶面涂抹与根际接种均提高了植株株高、冠幅、根茎叶生物量，这与Li Xia等[30]的研究结果相似。DSE定殖后协同植物根系分泌出大量有机酸和活性酶，有利于土壤中难溶性营养元素转换为离子态供植物快速吸收利用，起到增加土壤C、N、P的养分含量和延长供给时间的作用[31]。同时DSE与宿主植物互惠共生，具有植物–土壤之间的桥梁作用，增大土壤与植物根系营养传导的途径，从而提升植物对土壤中营养元素的吸收效率，增加植物各部位营养物质积累，促进植株生长[32-33]。此外，DSE提高了植株光合作用也是一个重要的原因，研究表明2个DSE接种处理均提高了蛋白桑叶绿素含量[30]。DSE菌液叶面涂抹与根际接种显著提升蛋白桑叶相对饲用品质，该结果与魏勇等[34]研究结果相似。纤维含量是评价牧草品质的重要指标，纤维含量越低动物消化率越低，饲用品质越高[26]。本研究发现DSE促进蛋白桑植株的生长发育，降低了叶片木质化比例，表现出接种DSE处理蛋白桑叶片ADF和NDF含量均显著低于CK处理，而RFV显著高于CK处理[35]。
研究表明，DSE菌液叶面涂抹方式在蛋白桑提质增产方面优于根际接种处理，前者蛋白桑茎鲜重、叶鲜重、株高、冠幅均高于后者，这是因为植物体内90%的干物质累积，直接、间接来自叶片的光合作用。叶面涂抹处理菌液直接作用于叶片，菌液中营养物质可以直接被叶片吸收，同时降低蛋白桑茎叶比，优化蛋白桑生长结构，提高光合作用接触面积，提高蛋白桑叶片光合速率，促进叶片生长及生物量的累积，从而提升蛋白桑地上部整体的RFV值。而DSE根际接种是作用于植株根系，很难有效定殖于蛋白桑地上部分的器官中，对叶片叶绿素含量及潜在的光合速率影响低于DSE菌液叶面涂抹处理。
叶面涂抹DSE菌液具有在矿区生态修复的应用前景。一方面，DSE菌液具备叶面肥的应用潜力。相较于土壤施肥，DSE叶面施肥具有针对性强，施肥用量少，养分吸收运转效率高，产效显著等优点，适应于土壤环境干旱、低湿、过酸过碱等不良因素造成根系吸收作用受阻等境况[36]。同时，DSE菌液具有较强的黏性，能够很好地附着在植物叶片上，在植物叶片表面形成保护膜，减少采煤沉陷区恶劣环境对植物生长的创伤。基于上述DSE菌液的特性，采用无人机叶面施肥是一个较好的方式，该技术具有快速、高效、安全、人工成本低、工期短等优点，在地质条件恶劣的采煤沉陷区进行微生物复垦具有较大优势[37]。另一方面，DSE叶面涂抹促进蛋白桑对C、N元素的吸收，分别比根际接种处理显著提升19.4%、19.5%，同时通过提高了蛋白桑叶绿素含量增加地上生物量，具有较强的固碳作用，对于实现绿色矿山高质量发展和我国“双碳”目标具有重要意义。此外，DSE菌液叶面涂抹提升了蛋白桑叶片的饲用品质，提高矿区生态修复所产生的经济价值，达到“以修复实现复垦，以复垦创造产业，以产业发展经济，以经济回馈修复”的良性循环，从而加快矿区生态修复的进程[4]。
4 结 论
a. DSE菌液叶面涂抹与根际接种均促进了蛋白桑对C、N、P元素的吸收，增加了叶片叶绿素含量，提高了光合作用速率，促进了蛋白桑地上部分生长发育，并显著提升蛋白桑叶片的相对饲用品质，提升蛋白桑在矿区复垦中的生态和经济效益。
b. 相较于传统的根际接种，DSE菌液叶面涂抹能够使DSE快速定殖于蛋白桑叶片，协同菌液的营养成分大大提高了蛋白桑的生物量，同时该方式具有养分吸收快、利用率高、见效快的特点，为采煤沉陷区生态复垦提供了一种新的微生物菌肥施用方式。
c. DSE叶面涂抹促进蛋白桑对C、N元素的吸收，分别比根际接种处理显著提高19.4%、19.5%，同时蛋白桑株高、冠幅、根茎叶生物量也得到显著提升，具有较强的固碳作用，对于实现绿色矿山高质量发展和我国“双碳”目标具有重要意义。
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图 1 不同处理下蛋白桑地上、地下生物量和总生物量
Fig. 1 The aboveground and underground biomass and total biomass of Morus alba under different treatments
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图 2 不同处理蛋白桑植株各器官C、N、P含量
Fig. 2 C, N and P in organs of Morus alba plant with different protein treatments
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图 3 不同处理下蛋白桑的中性和酸性洗涤纤维含量
Fig. 3 NDF content and ADF content of Morus alba under different treatments
表 1 室内盆栽土壤理化性质
Table 1 Physical and chemical properties of indoor potting soil
密度/(g·cm−3) 有机质含量/(g·kg−1) 全碳含量/(g·kg−1) 全氮含量/(g·kg−1) 全磷含量/(g·kg−1) 速效磷含量/(mg·kg−1) 速效钾含量/(mg·kg−1) 1.60±0.17 0.84±0.12 1.13±0.15 0.80±0.09 0.45±0.06 1.84±0.46 12.35±1.33 
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表 2 不同处理蛋白桑的生长指标
Table 2 Growth indexes of different treatments of Morus alba
处理 根鲜重/g 茎鲜重/g 叶鲜重/g 茎叶比 株高/cm 冠幅/cm CK 3.67±0.34b 1.70±0.23b 3.01±1.19b 0.74±0.08a 27.33±1.76b 15.93±1.96b YMTM 7.22±1.01a 6.58±0.90a 13.52±2.67a 0.50±0.05b 57.57±5.62a 28.77±3.50a GXZR 8.05±0.26a 4.95±0.17a 8.72±0.51ab 0.57±0.02ab 47.80±1.68a 28.67±1.27a 注：表中不同小写字母表示同列不同处理间具有显著性差异(α<0.05)，下同。
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表 3 不同处理对蛋白桑叶绿素含量的影响
Table 3 Effect of different treatments on chlorophyll content of Morus alba
处理 叶绿素a含量/(mg·g−1) 叶绿素b含量/(mg·g−1) 总叶绿含量/(mg·g−1) CK 0.85±0.08b 0.49±0.05b 1.34±0.12b YMTM 1.30±0.11a 0.75±0.06a 2.06±0.17a GXZR 1.02±0.06ab 0.59±0.08ab 1.61±0.13ab
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表 4 不同处理土壤及蛋白桑植株C、N、P含量
Table 4 C, N and P in soil and Morus alba plants under different treatments
处理 全碳(C) 全氮(N) 全磷(P) 土壤含量/(g·kg−1) 植株总累积量/g 土壤含量/(g·kg−1) 植株总累积量/g 土壤含量/(g·kg−1) 植株总累积量/g CK 0.99±0.03b 1116.44±163.31b 0.10±0.01b 86.11±11.74b 0.38±0.03a 5.54±0.73b YMTM 1.59±0.24a 2956.34±478.30a 0.13±0.01a 239.13±39.00a 0.24±0.02b 11.84±1.95a GXZR 1.19±0.07ab 2476.28±163.30a 0.11±0.01ab 200.08±7.33a 0.28±0.03b 7.14±0.49b
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